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Las acciones formativas de Formacioncontinua tienen modalidad online
Modalidad
ONLINE
Duración de las acciones formativas de formacioncontinua
Duración Total
120 H
Duración de teleformación de las acciones formativas de formacioncontinua
Horas Teleformación
60 H
Precio de las acciones formativas de INESEM
420 € Hasta 100% bonificable
Entidad
INESEM Formación Continua
Presentación
Descripción
En el ámbito de agraria, es necesario conocer los diferentes campos de la realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos, dentro del área profesional ganadería. Así, con el presente curso se pretende aportar los conocimientos necesarios para realizar análisis de biología molecular en muestras biológicas.
Objetivos
  • Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de ADN y/o ARN en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
  • Aplicar técnicas de extracción, cuantificación y purificación de proteínas en muestras biológicas, siguiendo protocolos y normas de seguridad.
  • Aplicar técnicas de separación y purificación de fragmentos de ADN y de proteínas mediante electroforesis.
  • Aplicar técnicas de separación e identificación de proteínas mediante técnicas de cromatografía, inmunodetección y proteómica.
  • Aplicar técnicas de PCR y de RT
  • PCR, teniendo en cuenta protocolos e indicando sus aplicaciones.
  • Aplicar técnicas de hibridación con sondas genéticas y de análisis de fragmentos de ADN, siguiendo protocolos preestablecidos.
  • Aplicar la técnica de secuenciación de fragmentos de ADN según protocolos preestablecidos.
Para qué te prepara
La presente formación se ajusta al itinerario formativo del Módulo Formativo MF1740_3 Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas, certificando el haber superado las distintas Unidades de Competencia en él incluidas, y va dirigido a la acreditación de las Competencias Profesionales adquiridas a través de la experiencia laboral y de la formación no formal, vía por la que va a optar a la obtención del correspondiente Certificado de Profesionalidad, a través de las respectivas convocatorias que vayan publicando las distintas Comunidades Autónomas, así como el propio Ministerio de Trabajo (Real Decreto 1224/2009 de reconocimiento de las competencias profesionales adquiridas por experiencia laboral).
A quién va dirigido
Este curso está dirigido a los profesionales del mundo de la agraria, concretamente en realización de procedimientos experimentales con animales para investigación y otros fines científicos, dentro del área profesional ganadería, y a todas aquellas personas interesadas en adquirir conocimientos necesarios para realizar análisis de biología molecular en muestras biológicas.

temario

  1. Tipos de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
    1. - Extracción de ADN (a partir de sangre, tejidos o células en cultivo, células bucales,…)
    2. - Extracción de ARN (mediante tiocianato de guanidina, urea-cloruro de lítio, purificación de poli(A)-ARN,
  2. Determinación analítica. Perfil analítico. Cartera de servicios.
    1. - Determinación de ácidos nucleicos
    2. - Separación analítica y preparativa del ADN (electroforesis analítica, geles de agarosa, …)
  3. Errores más comunes en la manipulación de las muestras.
    1. - Identificación y etiquetado de las muestras
    2. - Contaminación (por RNAsas, DNA,…)
    3. - Degradación enzimática
  4. Características generales de la obtención y procesamiento de muestras para análisis de ADN, ARN y proteínas.
    1. - Obtención de ADN y ARN a partir de tejidos líquidos (anticoagular)
    2. - Inhibidores RNAsas
  5. Prevención de riesgos en la obtención, manipulación y procesamiento de muestras biológicas.
    1. - Recepción o toma de muestras. Medidas preventivas
    2. - Precauciones generales relativas al laboratorio
    3. - Precauciones durante el desarrollo del trabajo
    4. - Reglas de higiene personal
  1. Etiquetado e identificación de las muestras.
  2. Sistemas y formatos de archivos. Sistemas de almacenamiento.
  3. Equipos de almacenamiento (-20ºC, - 80º C)
  4. Transporte de muestras (ADN: descongeladas, tubos estabilizadores ARN, tiempo de transporte recomendado 72 horas. ARN, congelado mediante agentes crioprotectores y con inhibidores de ARNAsas).
  5. Prevención de riesgos en la conservación y transporte de muestras biológicas.
    1. - Precauciones durante el desarrollo del trabajo
    2. - Reglas de higiene personal
    3. - Almacenamiento de muestras biológicas. Zonas de acceso restringido. Contenedores específicos. Manejo con EPIs
    4. - Transporte de material biológico. Sistema básico de embalaje. Identificación
  1. Composición molecular, estructura y función de los ácidos nucleicos.
    1. - Composición química y estructura de los ácidos nucleicos: Nucleótidos de importancia biológica y Factores que estabilizan la doble hélice
    2. - Funciones de los ácidos nucleicos
  2. Descripción de las enzimas asociadas a los ácidos nucleicos.
    1. - Endonucleasas (Tipo 1 y 2)
    2. - Polimerasas
    3. - Ligasas
    4. - Nucleasas
    5. - Fosfatasas
    6. - Quinasas
    7. - ARNasas
  3. Replicación del ADN.
    1. - Modo semiconservativo
    2. - Horqueta de replicación
    3. - Enzimas que intervienen en el proceso
    4. - Molécula accesoria: Iniciador
  4. Transcripción del ADN y su control.
    1. - Proceso: Cadena molde o antisentido. ARNm o transcripto primario. Enzima que dirige: polimerasa de ARN
    2. - Modificaciones postranscripcionales.
  5. Mecanismos de reparación del ADN.
    1. - Agentes genotóxicos y mecanismos de reparación del DNA
    2. - Reparación de dímeros de pirimidinas mediante fotoreactivación
    3. - Remoción de grupos metilo
    4. - Bases mal apareadas
    5. - Metilación del DNA
    6. - Reparación del DNA durante o después de su replicación
    7. - Reparación de cortes en ambas cadenas del DNA
    8. - Sistemas De reparación de DNA: NER (Nucleotide Excision Repair)
    9. - Mecanismos de reparación de DNA: BER (Base escisión Repair)
  6. Mutaciones del ADN, alteraciones en las proteínas que sintetizan y enfermedades asociadas.
    1. - Alteraciones que puede sufrir el ADN: Mismatch (mal apareamiento), Desaminación, Pérdida de bases, Unión covalente entre bases de la misma cadena, Unión de grupos alquilo, Ruptura de simple cadena (nick) y Ruptura de doble cadena
    2. - Alteraciones en las proteínas que se sintetizan y enfermedades asociadas. Desnaturalización
  7. Estructura y función de las proteínas.
    1. - Aminoácidos y neurotransmisores
    2. - Enlaces peptídicos, oligopeptidos y polipeptidos
    3. - Estructura primaria, secundaria , terciaría y cuaternaria
    4. - Funciones de las proteínas: estructural, reguladora, de transporte, de reserva, enzimática, mensajera y de receptores químicos
  8. Transcripción y traducción.
    1. - Moléculas implicadas en la transcripción y traducción de las proteínas
    2. - Fases de la transcripción de las proteínas
    3. - Fases de la traducción de las proteínas
    4. - Regulación de la transcripción y traducción
  9. Síntesis y modificación de las proteínas.
    1. - Moléculas implicadas en la síntesis y traducción de las proteínas
    2. - Fases de la síntesis de las proteínas
    3. - Fases de la modificación de las proteínas
    4. - Regulación de la síntesis y modificación de las proteínas
  10. Alteraciones conformacionales de las proteínas.
    1. - Serpinopatías
    2. - Proteínas priónicas
    3. - Neuroserpinas
    4. - Hemoglobina
    5. - Repeticiones de glutamato
    6. - Proteína Tau
    7. - Inmunoglobulinas cadenas ligeras
    8. - Proteína CFRT Péptido B-amiloide
    9. - Superóxido dismutasa
    10. - B2 microglobulina
  1. Electroforesis.
    1. - Tipos de electroforesis: unidimensionales, bidimensionales y técnicas relacionadas.
    2. - Separación electroforética de las proteínas séricas. Patrones de normalidad y de alteración
    3. - Características del material y de los reactivos. Averías o disfunciones
  2. Técnicas cromatográficas.
    1. - Características de los equipos. Condiciones de uso y mantenimiento
    2. - Calibración. Averías o disfunciones
    3. - Características del material y de los reactivos
  3. Técnicas de inmunodetección.
    1. - Inmunocitoquímica
    2. - Western blot
    3. - Inmunoprecipitación
    4. - Co-inmunoprecipitación
    5. - Pull-down
    6. - TUNEL
  4. Espectrometría de masas.
    1. - Fundamento y aplicaciones.
    2. - Características de los equipos.
    3. - Condiciones de uso y mantenimiento. Calibración. Averías o disfunciones.
    4. - Características del material y de los reactivos.
  5. Tecnología de microarrays y chips de proteínas.
    1. - Microarrays de ADN: Diseño de un microarrays de ADN. Tipos
    2. - Microarrays de Proteínas: Diseño de un microarrays de proteínas. Tipos
    3. - Microarrays de Carbohidratos: Diseño de microarrays de carbohidratos. Aplicaciones
    4. - Microarrays de Células
    5. - Microarrays de Tejidos
    6. - Perspectivas de mercado de los microarrays y biochips en el área de salud humana
  6. Bioinformática. Bases de datos de proteómica.
    1. - Genómica funcional
    2. - Relación entre la biología y la informática
    3. - Biochips
    4. - Bioinformática
    5. - Bibliografía
  1. Extracción. Purificación y análisis espectroscópico y electroforético de ácidos nucleicos.
    1. - Material y métodos
  2. Amplificación de ADN mediante PCR y variantes.
    1. - El ADN
    2. - Los enzimas
    3. - Los nucleótidos
    4. - Los cebadores
    5. - Limitaciones y problemas de la PCR (tamaño secuencias limitado, PCR previa, contaminación, inespecifidad de cebadores,…)
  3. Electroforesis y técnicas relacionadas.
    1. - Factores que afectan a la movilidad del ADN en el gel (masa molecular, voltaje, composición de las bases, temperatura, solución amortiguadora,…)
    2. - Tipos de electroforesis: PFGE (Pulsed Field Gel Electroforesis), OFAGE (Orthogonal Field Alternative Gel), FIGF (Field Inversion Gel Electroforesis), CHEF (Contour Clamped Homogeneus Electric Field), Electroforesis preparative.
    3. - Aplicaciones: Análisis comparativos de patrones de restricción cromosómicos, construcción de mapas cromosómicos, topología y tamaño de cromosomas, análisis de elementos extracromosómicos
  4. Hibridación de ácidos nucleicos.
    1. - Factores que influyen en la hibridación.
    2. - Composición de las bases.
    3. - Concentración de ADN/ARN y tiempos Cot y Rot
    4. - Concentración y tamaño de la sonda
    5. - Concentración ADN diana
    6. - Desnaturalización del ADN diana y fijación a un soporte.
    7. - Marcaje de una sonda monocadena
    8. - Hibridación: mezcla y renaturalización
    9. - Detección de los híbridos
    10. - Medio de reacción
    11. - Polímeros inertes
    12. - Tiempos de hibridación y mecanismos de detección.
    13. - Tipos de hibridación (soporte sólido, en fase líquida, in situ, in situ sobre cromosomas, in situ de bacterias para clonaje).
  5. Análisis de fragmentos de ADN.
    1. - Método Southerm
    2. - Métodos de transferencia (por capilaridad, por vacío, electroforético)
    3. - Aplicaciones del Método Southerm
    4. - Mapas de restricción
    5. - Detección de polimorfismos (RFLP, VNTR, STR) y deleciones.
  6. Secuenciación.
    1. - Secuenciación química, método de Maxam y Gilbert
    2. - Secuenciación enzimática, método de Sanger o de los dideoxinucleótidos.
    3. - Tipos de secuenciaciones enzimáticas (Cíclica, múltiple, automática, quimioluminiscente)
  7. Tecnología de microarrays y chips de ácidos nucléicos.
    1. - Utilidad: analizar el genoma completo de un organismo
    2. - Fundamento: hibridación con sondas
    3. - Soporte: placas microtitulación o membranas de blotting
    4. - Fabricación: pueden ser creados en el laboratorio o usando robótica : Macroarray: señales > 300 micras y Microarray: pocillos < 200 micras
  8. Aplicaciones: identificación de secuencias (genes, Mutaciones), determinación del nivel de expresión génica, descubrimiento de genes, diagnóstico de enfermedades, Farmacogenómica: desarrollo de Fármacos y Toxicogenómica: investigación Toxicológica
  9. Bioinformática. Bases de datos de genómica.
    1. - Introducción a la Bioinformática
    2. - Consulta de Bases de datos en biología molecular
    3. - Alineamiento de secuencias
    4. - Predicción de genes
    5. - Introducción a los microarrays de DNA
  1. Genoma: células, cromosomas y genes.
    1. - Definición de genoma, gen y cromosoma
    2. - Organización, estabilización y localización del genoma
  2. Estructura y función de los genes y cromosomas.
    1. - Estructura del ADN
    2. - Estructura del ARN
    3. - El código genético
    4. - Secuencias codificantes versus no codificantes
  3. Bases cromosómicas de la enfermedad.
    1. - Citogenética. El cariotipo normal en los roedores de laboratorio
    2. - Anomalías del número de cromosomas (Heteroploidías)
    3. - Anomalías de la estructura de los cromosomas
  4. Herencia y enfermedad: enfermedades monogénicas, patrones de herencia, enfermedades poligénicas. Susceptibilidad genética.
    1. - Genético
    2. - Congénito
    3. - Hereditario
  5. Genética de las enfermedades comunes.
    1. - Modelos provenientes de mutaciones espontáneas o inducidas
    2. - Modelos generados por transgénesis
    3. - Modelos generados in Vitro por manipulación de células ES
    4. - Modelos generados por transgénesis condicional
  6. Genética de la reproducción y del diagnóstico prenatal.
    1. - Modelos animales del desarrollo embrionario
    2. - Diagnóstico prenatal rápido de aberraciones cromosómicas por PCR
    3. - Diagnóstico citogenético
    4. - Diagnóstico prenatal de enfermedades hereditarias
  7. Diagnóstico en medicina legal y forense.
    1. - VNTR
    2. - STR
  8. Modelos animales de enfermedad de base genética.
    1. - Modelos murinos de enfermedades hereditarias simples (mendelianas): Desórdenes de la visión, de la audición, neurológicos y neuromusculares. Enfermedades de los huesos y cartílagos, de la piel y el pelo, hematológicas, inmunodeficiencias y metabólicas
    2. - Modelos murinos de enfermedades hereditarias complejas (multigénicas): Cáncer, obesidad, diabetes, etc.

metodología

claustro

Claustro Docente

Ofrecerá un minucioso seguimiento al alumno, resolviendo sus dudas.

campus virtual

Formación Online

Toda nuestra oferta formativa es de modalidad online, incluidos los exámenes.

materiales didácticos

Comunidad

En la que todos los alumos de INESEM podrán debatir y compartir su conocimiento.

material adicional

Materiales Didácticos

En la mayoría de nuestras acciones formativas, el alumno contará con el apoyo de los materiales físicos.

Centro de atención al estudiante (CAE)

Material Adicional

El alumno podrá completar el proceso formativo y ampliar los conocimientos de cada área concreta.

inesem emplea

Campus Virtual

Entorno Persona de Aprendizaje disponible las 24 horas, los 7 días de la semana.

Una vez finalizado el proceso de matriculación, el alumno empieza su andadura en INESEM Formación Continua a través de nuestro Campus Virtual.

La metodología INESEM Business School, ha sido diseñada para acercar el aula al alumno dentro de la formación online. De esta forma es tan importante trabajar de forma activa en la plataforma, como necesario el trabajo autónomo de este. El alumno cuenta con una completa acción formativa que incluye además del contenido teórico, objetivos, mapas conceptuales, recuerdas, autoevaluaciones, bibliografía, exámenes, actividades prácticas y recursos en forma de documentos descargables, vídeos, material complementario, normativas, páginas web, etc.

A esta actividad en la plataforma hay que añadir el tiempo asociado a la formación dedicado a horas de estudio. Estos son unos completos libros de acceso ininterrumpido a lo largo de la trayectoria profesional de la persona, no solamente durante la formación. Según nuestra experiencia, gran parte del alumnado prefiere trabajar con ellos de manera alterna con la plataforma, si bien la realización de autoevaluaciones de cada unidad didáctica y evaluación de módulo, solamente se encuentra disponible de forma telemática.

El alumno deberá avanzar a lo largo de las unidades didácticas que constituyen el itinerario formativo, así como realizar las actividades y autoevaluaciones correspondientes. Al final del itinerario encontrará un examen final o exámenes. A fecha fin de la acción formativa el alumno deberá haber visitado al menos el 100 % de los contenidos, haber realizado al menos el 75 % de las actividades de autoevaluación, haber realizado al menos el 75 % de los exámenes propuestos y los tiempos de conexión alcanzados deberán sumar en torno al 75 % de las horas de la teleformación de su acción formativa. Dicho progreso se contabilizará a través de la plataforma virtual y puede ser consultado en cualquier momento.

La titulación será remitida al alumno por correo postal una vez se haya comprobado que ha completado el proceso de aprendizaje satisfactoriamente.

Requisitos de acceso

Esta formación pertenece al programa de Formación Continua de INESEM. Esta formación se tramita con cargo a un crédito que tienen asignado las empresas privadas españolas para la formación de sus empleados sin que les suponga un coste.

Para tramitar dicha formación es preciso cumplir los siguientes requisitos:

  • Estar trabajando para una empresa privada
  • Encontrarse cotizando en Régimen General de la Seguridad Social
  • Solicitar un curso que esté relacionado con el puesto de trabajo o con la actividad empresarial
  • Que la empresa autorice la formación
  • Que la empresa disponga de suficiente crédito formativo para cubrir el coste del curso

titulación

Titulación de Formación Continua Bonificada expedida por el Instituto Europeo de Estudios Empresariales (INESEM). TITULACIÓN de haber superado la FORMACIÓN NO FORMAL que le Acredita las Unidades de Competencia recogidas en el Módulo Formativo MF1740_3 Análisis de Biología Molecular en Muestras Biológicas, regulado en el Real Decreto RD 983/2013, de 13 de diciembre, por el que se establece el Certificado de Profesionalidad AGAN0212 Realización de Procedimientos Experimentales con Animales para Investigación y Otros Fines Científicos. De acuerdo a la Instrucción de 22 de marzo de 2022, por la que se determinan los criterios de admisión de la formación aportada por las personas solicitantes de participación en el procedimiento de evaluación y acreditación de competencias profesionales adquiridas a través de la experiencia laboral o vías no formales de formación. INSTITUTO EUROPEO DE ESTUDIOS EMPRESARIALES, S.A.U. es una entidad participante del fichero de entidades del Sepe, Ministerio de Trabajo y Economía Social.
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